SN/T 4890-2017 出口食品中姜黄素的测定 高效液相色谱法和液相色谱-质谱/质谱法.pdf

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中华人民共和国出入境检验检疫行业标准

SN/T4890-2017

出口食品中姜黄素的测定 高效液相色谱法和液相色谱-质谱/质谱法

Determination of curcuminoids in foodstuffs for export-HPLCmethodandHPLC-MS/MSmethod

中华人民共和国 国家质量监督检验检疫总局 发布

前言

本标准按照GB/T1.1一2009给出的规则起草.

请注意本文件的某些内容可能涉及专利.本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任.

本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口.

本标准起草单位:中华人民共和国厦门出人境检验检疫局、中华人民共和国陕西出人境检验检疫局.

本标准主要起草人:陈鹭平、方恩华、徐敦明、林立毅、林建忠、洪煜琛、王鹭晓、孙婷、黎翠玉.

出口食品中姜黄素的测定 高效液相色谱法和液相色谱-质谱/质谱法

1范围

本标准规定了出口食品中姜黄素的高效液相色谐法和液相色谐-质谱/质谱测定方法.

本标准适用于果冻、巧克力制品、碳酸饮料、麦片、冰淇淋、训制乳粉、调味糖浆、粉圆、复合调味料、酥炸粉、渍的蔬菜、方便面饼、影化食品等食品中姜黄素总量的测定和确证.

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的.凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件.凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括的修改单)适用于本文件.

GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法

3术语和定义

下列术语和定义适用于本文件.

3.1

姜黄素类化合物curcuminoids

分为三种化合物.包括姜黄素(Curcumin)、脱甲氧基姜黄素(Dcmethoxycurcumin)、双脱甲氧基姜黄素(Bisdemethoxycurcumin),其含量之和称为要黄素总含量(mg/kg).3.2

食品添加剂姜黄turmeric

姜科姜黄属植物原料或其粗提取产物,为粉状或油膏状,其中的姜黄素总含量较低,三种姜黄素的含量水平近似.

3.3

食品添加剂姜黄素curcumins

的含量相对偏高. 姜科姜黄属植物粗提取产物,再经物理方法精制而得,为结晶状,姜黄素总含量较高,其中Cur1

第一法高效液相色谱法

4方法提要

采用甲醇-水溶液提取试样中的姜黄素,提取液直接过滤后测定,对于杂质干扰严重或含量较低的食品样品需要用聚酰胺固相萃取柱富集和净化,洗脱液氮气吹干定容.用高效液相色谱仪,DAD或UV-vis检测器测定,外标法峰面积定量.

SN/T 4890-2017

5试剂和材料

除另有说明外,所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水.5.2乙睛:液相色谱级. 5.1甲醇:液相色谱级.5.3甲酸:液相色谱级.5.4氨水:36%,分析纯.5.52%氨化甲醇溶液:量取2mL氨水(5.4).用甲醇(5.1)溶解并定容至100mL,混匀.5.60.1%甲酸水溶液:量取1mL甲酸(5.3),加水溶解并定容至1000mL,混匀.5.70.1%甲酸乙晴溶液:量取1mL甲酸(5.3),加乙晴溶解并定容至1000mL.混匀. 5.8提取溶剂:甲醇-水(73.体积比),量取700mL甲醇(5.1)和300mL水,混匀.5.9淋洗溶剂:5%甲醇水(体积比),量取5mL甲醇(5.1)和95mL水,混匀.5.10姜黄素(以下简称CurI)标准物质:Curcumin,CHO,CAS号:458-37-7,纯度≥98%.标准物质详细信息见附录A中表A.1.5.11脱甲氧基姜黄素(以下简称Cur)标准物质:Demethoxycurcumin,CHO,CAS号:22608-11- 3,纯度≥98%.5.12双脱甲氧基姜黄素(以下简称Cur)标准物质:Bidemethoxycurcumin.CHO.CAS号:24939-16-0,纯度≥98%.5.13标准储备液:准确称取适量的(精确至0.1mg)三种姜黄色素标准物质,混合后用甲醇溶解定容至50mL,以CurI.CurⅡI和Cur分别计,溶液浓度各自相当于200mg/L.0℃~4℃避光保存,6个5.14标准工作溶液:吸取适量标准储备液(5.13),用提取溶剂(5.8),配成0.500mg/L,1.00mg/L, 月内含量稳定.10.0mg/L.20.0mg/L,100mg/L.的标准工作溶液,临用前配制,0℃~4℃避光保存.5.15AnpelcleanPA聚酰胺固相萃取柱或相当者:规格60mg,3mL.5.16亲水性聚四氟乙烯(PTFE)针式微孔滤膜或相当者:规格13mm,0.45μm.

6仪器与设备

6.1高效液相色谱仪,配有二极管阵列检测器或配有UV-vis检测器.6.2分析天平:感量0.01g和0.1mg.6.3均质器,转速不小于15000r/min. 6.4离心机:转速不低于4500r/min.6.5离心管:50mL塑料离心管.6.6氮吹仪.

7测定步骤

7.1试样制备与保存

在制样的操作过程中,应防止样品污染或发生残留物含量的变化.取代表性样品约500g,用粉碎机充分粉碎,混匀,均匀性较好的液体样品不用均质直接取用.试样均分为两份,装入洁净玻璃容器,密封,并标明标记.于4℃以下存放.

7.2含干扰物质较少的食品(如面条等)直接提取

称取试样约2.5g(精确至0.01g)于50mL离心管中,加人20mL甲醇-水(5.8),在均质器上均质提取1min后,将试样提取液全部转人25mL容量瓶中,用甲醇-水(5.8)定容到25mL,混匀后转移到式滤膜,供仪器测定. 另外干净离心管中,以4000r/min离心2min后,直接取上清液过0.45μm亲水聚四氟乙烯(PTFE)针

7.3含干扰物质较多的食品(如乳粉,冰淇淋、焙烤坚果等)需净化

称取试样约2.5g(精确至0.01g)于50mL离心管中,加人20mL甲醇-水(5.8),在均质器上均质另外干净离心管中,以4000r/min离心2min,取上清提取液2.5mL待净化. 提取1min后,将试样提取液全部转人25mL容量瓶中,用甲醇-水(5.8)定容到25mL.混匀后转移到

聚酰胺固相萃取柱使用前,依次用3mL.甲醇、3mL水活化.将上清提取液2.5mL全部过柱,过滤速度不宜过快.上样完毕后,以2mL5%甲醇水(5.9)淋洗固相萃取柱,淋洗后抽干固相萃取柱.用1.0mL的2%氨化甲醇(5.5)洗脱并收集,洗脱液需尽快转移到氮吹仪,在40C用氮气吹干后,用 1.00mL甲醇(5.1)溶解定容,过0.45μm亲水聚四氟乙烯(PTFE)针式滤膜,供仪器测定.

7.4测定

7.4.1液相色谱参考条件

7.4.1.1色谱柱:CNW-AthenaC18-WP.120A,4.6mm×250mm,5μm,或相当者.7.4.1.2流动相:A:0.1%甲酸水溶液(5.6).B0.1%甲酸乙晴溶液(5.7),4555(体积比). 7.4.1.3洗脱方式:等度,18min.7.4.1.4柱温:25℃.7.4.1.5进样量:15pl.7.4.1.6流速:1.00mL/min7.4.1.7检测器检测波长:420nm

7.4.2色谱测定

定量测定:在仅器最佳工作条件下,对混合标准工作溶液进样测定,以待测物的浓度为横坐标,以待品瓶中待测物的响应面积应在仪器测定的标准溶液线性范围内.如果初测结果高于线性范围上限的, 测物的峰面积为纵坐标绘制标准工作曲线,按外标峰面积法,用标准工作曲线对待测样品进行定量,样复测时需将定容后的溶液适当稀释:如果初测结果在线性范围下限附近的,复测时在净化步骤中可以增加提取液过柱的体积,予以适当浓缩,使其在线性范围内.在上述色谱条件下,姜黄素的液相色谱图参见附录B中图B.1.

7.4.3空白试验

除不加试样外,均按上述步骤进行.

8结果计算和表述

8.1三种姜黄素各自的含量

用色谱数据处理机或按式(1)计算试样中待测着色剂含量.

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