GB/T 21310-2007动物源性食品中甲状腺拮抗剂残留量检测方法 高效液相色谱串联质谱法.pdf

内标,标记,浓度,苯并咪唑,食品,推荐性国家标准
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中华人民共和国国家标准

GB/T21310-2007

动物源性食品中甲状腺拮抗剂残留量 检测方法高效液相色谱/串联质谱法

Determination of residues of thyreostats in foodstuffs of animal originHPLC-MS/MSmethod

中国国家标准化管理委员会 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局 发布

前言

本标准的附录A、附录B、附录C均为资料性附录.本标准由中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局提出. 本标准由国家认证认可监督管理委员会归口.本标准起草单位:中国检验检疫科学研究院、中华人民共和国山东出入境检验检疫局.本标准主要起草人:彭涛、于静、国伟、李晓娟、孙利、凌云、代汉慧、张鸿伟、储晓刚、唐英章.

动物源性食品中甲状腺拮抗剂残留量 检测方法高效液相色谱/串联质谱法

1范围

本标准规定了动物源性食品中硫脲蜜啶(2-thiouracil,TU)、甲蕴咪唑(methimazole,TAP)、甲基硫氧嘧啶(methyl thiouracil,MTU)、丙硫氧嘧啶(propyl thiouracil,PTU)、苯基硫氧嘧啶(phenyl thi-ouracil.PhTU)、2-硫基苯并咪唑(2-mercaptobenzimidazole,MB)残留量高效液相色谱/中联质谱测定方法.

本标准适用于动物源性食品肌肉(免肉、鸡肉、牛肉、猪肉)、内脏(免肝、鸡肝)、奶和蛋中硫脲嗜啶、甲硫味唑、甲基硫氧嘧啶、丙硫氧嘧啶、苯基硫氧嘧啶、2-硫基苯并咪唑残留量的定性确证和定量测定.

2规范性引用文件

的修改单(不包括勘误的内容)或修订版均不适用于本标准,然面,鼓励根据本标准达成协议的各方研究 下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款.凡是注日期的引用文件,其随后是否可使用这些文件的最新版本.凡是不注日期的引用文件,其最新版本适用于本标准.

GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法(GB/T6682-1992,neqISO3696:1987)

3方法提要

采用乙酸乙酯提取试样中残留的硫脉磁啶、甲蔬咪唑、甲基硫氧嘧啶、丙硫氧穆啶、苯基硫氧密啶和2-硫基苯并咪唑,提取液经液液分配和HLB固相萃取柱净化后,采用高效液相色谱/串联质谱定性检测.内标法定量.

4试剂和材料

除非另有说明,试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水.

4.1甲醇:高效液相色谱级.4.2甲酸:高效液相色谱级.4.3乙酸乙酯:高效液相色谱级. 4.4正已烷:高效液相色谱级.4.5乙睛:高效液相色谱级.4.6磷酸.4.7蔬基乙醇.4.8二水乙二胺四乙酸二钠. 4.9无水硫酸钠:650C灼烧4h,置于干燥器中备用.定容至1L4.11乙睛饱和的正已烷:量取正已烷80mL于100mL分液漏斗中,加入适量乙晴后,剧烈振摇,待分配平衡后,弃去乙請层. 4.120.1%甲酸水溶液:准确量取1mL甲酸(4.2),用水定容至1L4.130.0025mol/L磷酸:准确量取0.2mL磷酸,用水定容至1 L.

4.14溶解液:90mL0.1%甲酸水溶液(4.12)中加入10mL甲醇.4.15标准物质:硫脲磁啶、甲蔬咪唑、甲基硫氧嘧啶、丙硫氧嘧啶、苯基硫氧嘧啶、2-硫基苯并咪唑,纯4.16内标物质:5,6-二甲基硫氧嘧啶(5,6-dimethyl-2-thiouracil,DMTU),纯度≥99%. 度均≥99%.4.17标准储备溶液:准确称取适量标准品(精确至0.0001g),用甲醇溶解,配制成浓度为100μg/mL的标准储备溶液,一18C冷冻避光保存,有效期3个月.4.18混合中间标准溶液:准确移取标准储备液(4.17)各1mL于10mL容量瓶中,用甲醇定容至刻4.19混合标准工作溶液:根据需要用甲醇把混合中间标准溶液(4.18)稀释成适合浓度的混合标准工 度,配制成浓度为10μg/mL的混合中间标准溶液,4C冷藏避光保存,有效期1个月.作溶液,现用现配.4.21内标标准工作溶液:准确移取0.1mL内标标准储备液(4.20)于10mL容量瓶中.用甲醇定容至 度为100μg/mL的内标标准储备溶液,-18C冷冻避光保存,有效期3个月.刻度,配制成浓度为1ug/mL的内标标准工作溶液,4C冷藏避光保存,有效期1个月.4.22HLB固相萃取柱;200mg,6mL,或相当者.4.23微孔滤膜:0.20pm,有机相.4.25氧气:纯度≥99.999% 4.24氮气:纯度≥99.999%

5仪器和设备

5.1液相色谱/申联质谱仪:配备电喷雾离子源(ESI).5.3分析天平:感量0.0001g.0.01g. 5.2组织搞碎机.5.4均质器:10000r/min.5.5振荡器.5.6离心机:10000r/min. 5.7氮吹仪.5.8旋涡混合器.5.9超声波水浴.5.10减压浓缩仪.5.11梨形瓶:100ml. 5.12具塞塑料离心管:50mL.5.13刻度试管:10ml.5.14移液枪:5mL,1mL,200μL5.15分液漏斗:50ml.

6试样制备

6.1肌肉和内脏

从原始样品取出有代表性样品约500g,用组织捣辞机充分接碎混匀,均分成两份,分别装入洁净容器作为试样,密封,并标明标记,将试样置于一18C冷冻避光保存.

6.2奶

从原始样品取出有代表性样品约500g,充分搅拌混匀,均分成两份,分别装入洁净容器作为试样,密封,并标明标记.将试样置于4C冷藏避光保存.

GB/T 21310-2007

6.3蛋

从原始样品取出有代表性样品约500g,去壳后用组织接碎机搅拌充分混匀,均分成两份,分别装人洁净容器作为试样,密封,并标明标记.将试样置于4C冷藏避光保存.

注:在制样的操作过程中,应防止样品污染或残留物含量发生变化.

7样品处理

7.1提取

(4.21)、50μL蔬基乙醇(4.7)、30gL0.1moL/L的乙二胺四乙酸二钠溶液(4.10)和适量无水硫酸钠 称取约5g试样(精确至0.01g)于50mL塑料离心管中,依次加人150pL内标标准工作液(4.9),吸去样品中的水分,再加人20mL乙酸乙酯,用均质器以10000r/min均质1min后,振荡提取20min,再以4000r/min离心5min,收集上清液于100mL梨形瓶中.残渣用20mL乙酸乙酯再提取漏斗中,用30mL乙晴饱和后的正已烷(4.11)分三次液液分配,去除油脂.收集乙层,在40C水浴中 一次,合并上清液,在40C水浴中减压浓缩至近干.残留物用10mL乙晴溶解,并转移至50mL分液减压浓缩至近干,残留物用10mL0.0025mol/L磷酸(4.13)溶解,超声波水浴助溶5min后,待净化.

7.2净化

HLB固相萃取柱依次用5mL甲醇、5mL水预淋洗后,转人10mL样品提取液(7.1).先用5mL水进行淋洗,弃去;再用5mL甲醇进行洗脱,收集洗脱液于10mL刻度试管中.整个固相萃取净化过 程控制流速不超过2mL/min.洗脱液在40C下用N.吹干.残留物用1mL溶解液(4.14)溶解,误动1min后,过0.2μm微孔滤膜.供仪器检测.

7.3混合基质标准溶渡的制备

别加人混合中间标准溶液(4.18)或混合标准工作溶液(4.19),再加人150uL内标标准工作液(4.21), 称取5份约5g阴性试样(精确至0.01g)于50mL塑料离心管中,按照标准曲线最终定容浓度分余下操作同7.1和7.2.

8测定

8.1液相色谱条件

a)色谱柱:Waters ACQUITYUPLCTBEH C50mm×2.1mm(内径),1.7μm,或相当者;b)柱温:30C;c)流速:0.2mL/min;d)进样量:5zL;e)流动相及洗脱条件见表1.

表1流动相及梯度洗脱条件

时间/min 流动相A(甲醇) 流动相 B(4.12)0 10% 90%1 00 10% 90%4 00 90% 10%6 00 90% 10%7 00 10% 90%10 00 10% 90%

8.2串联质谱条件

参见附录A.

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