T/SDYY 265-2026 五叶草莓脱毒组培快繁技术规程.pdf

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T/SDYY265-2026

五叶草莓脱毒组培快繁技术规程

Code of practice fortissue culture and rapid propagation forvirus-freeFragariapentaphylla Losinsk.

山东园艺学会 发布

T/SDYY265-2026

前言

文件按照GB/T1.1-2020《标准化工作导则第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定起草.

请注意本文件的某些内容可能涉及专利.本文件的发布机构不承担识别专利的责任.

本文件由山东园艺学会提出并归口.

本文件起草单位:青岛农业大学、尚好科技有限公司、山东省农业科学院、青岛市农业技术推广中心、青岛市农业科学研究院、成县连丰农产品有限责任公司、青岛华垦进出口有限公司、北京大学现代农业研究院.

本文件主要起草人:郑晓东、王彩虹、郁东兴、王俊峰、刘爱娜、李少旋、于连泽、鲍雯青、田义辑、赵强、孙志娟、王婵玉、刘萍、张庶、陈立勇、张蕊芬、周军会、梁咏琪、张瑶、孙泽春.

五叶草莓脱毒组培快繁技术规程

1范围

本文件界定了五叶草莓组培快繁的术语与定义,规定了外植体构建、初代培养、继代培养、生根培养、病毒检测等技术要求.

本文件适用于五叶草莓组培苗繁育.

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的.凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件.凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括的修改单)适用于本文件.

GB8599-2023大型压力蒸汽灭菌器技术要求

DB13/T5110-2019植物组织培养室组建及操作技术规程

3术语与定义

下列术语和定义适用于本文件.

3. 1

五叶草莓Fragaria pentaphylla Losinsk

蔷薇科草莓属,二倍体植物.叶片呈羽状五小叶,质地较厚,小叶片倒卵形或椭圆形.聚伞花序,白色花瓣,果实呈白色或红色卵圆形,平均单果重为0.8g-1.5g,表面密布棕红色斑点,其种子均凹于果面.

3.2

脱毒Virus elimination

利用组织培养,去除感染病毒的草莓植株体内所携带的病毒,从而获得无病毒种苗的过程.

3. 3

外植体 Explant

植物组织培养中作为离体培养材料的器官或组织片段.

4外植体构建

4.1外植体选取

选取健壮无病虫害的草莓植株,剪取当年生匍甸茎.以4月、5月、10月、11月晴天上午取材为宜.

4.2外植体预处理

剪取能甸茎顶端2cm~3cm,去除叶片和叶柄,用自来水流水冲洗1h,沥干备用.

4.3外植体消毒

4.3.1前期准备

用75%酒精擦拭超净工作台台面,清除灰尘和杂物,紫外灯照射灭菌30min~60min,之后通风10min.锻子、刀片、三角瓶等工具高温高压灭菌锅121C灭菌25min,冷却后备用.

4.3.2快速灭菌

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在超净工作台中将预处理后的甸茎放入无菌三角瓶,倒入75%乙醇,浸泡30s,期间轻轻摇晃三角瓶.然后倒出乙醇,立即用无菌水冲洗外植体3次,每次1min~2min.

4.3.3深层灭菌

在三角瓶中倒入适量有效氯含量为1%的NaClO溶液,溶液应没过外植体,浸泡5min~6min,期间轻轻摇晃三角瓶.然后倒出消毒剂,用无菌水冲洗外植体5次,每次2min~3min,期间轻轻摇晃三角瓶,减少消毒剂残留.

5初代培养

5.1激素的母液配制

将所需的6-苄氨基嘌呤(6-Benzylaminopurine,6-BA)、吲哚丁酸(Indole-3-butyric Acid,IBA)用1mol/LNaOH溶解,再用蒸馏水稀释后分别配制成0.1mg/mL的母液,装入棕色广口瓶中,置于4°C冰箱保存.

5.2初代培养基制备

热搅拌至完全溶解.溶解后加入0.5mg/L6-BA和0.1mg/LIBA,用1mol/LNaOH或1mol/LHC1调节 按所需容量的80%加蒸馏水,随后加入Murashige&Skoog培养基(M519干粉)、3%蔗糖,稍加pH至5.8~6.0.随后加入0.7%琼脂并充分搅拌,高温高压灭菌锅121C灭菌25min后分装备用,灭菌锅使用符合GB8599-2023要求.

5.3茎尖接种

生长点朝上接种在初代培养基上,一瓶接种3个~4个生长点为宜. 在解剖镜下,用锻子逐层剥去小叶,直至露出半球形的生长点,用刀片切取0.2mm~0.5mm茎尖,

5.4接种后管理

接种后,将培养瓶置于培养室培养,温度20℃~23°℃,光照强度2000lx,日均光照时长12h/d,培养室环境符合DB13/T5110-2019要求.

6继代培养

6.1继代芽体选择

从初代接种日起算,培养30d~40d后,茎尖分化出不定芽,形成2cm~3cm高的丛生芽时可进行继代增殖.

6.2继代培养基制备

按所需容量的80%加蒸馏水,随后加入M519干粉、3%蔗糖,稍加热搅拌至完全溶解.溶解后加入6-BA母液至终浓度0.5mg/L和IBA母液至终浓度0.03mg/L,用1mol/LNaOH或1mol/LHC1调节pH至 5.8~6.0.随后加入0.7%琼脂并充分搅拌,高温高压灭菌锅121℃灭菌25min后分装备用.

6.3继代苗接种

用无菌手术刀将单株苗从基部切下,去除愈伤,保证切口平整,避免撕裂,并将单株苗转接至继代培养基中.需注意的是,继代次数不宜超过7次,总培养时长不超过1年,以防止组培苗发生变异.

6.4接种后管理

接种后将组培苗置于光照强度2000Ix、日均光照时长12h、温度24℃~26℃、湿度60%~70%的培养室中培养.

7生根培养

7.1生根培养基制备

按所需容量的80%加蒸馏水,随后加入M519干粉、3%蔗糖,稍加热搅拌至完全溶解.溶解后加入0.3mg/LIBA,用1mol/LNaOH或1mol/LHC1调节pH至5.8~6.0.完全溶解后加入0.7%琼脂并充分搅拌,高温高压灭菌锅121C灭菌25min后分装备用.

7.2生根苗的选取与处理

小苗、黄化苗和玻璃化苗.用无菌手术刀将单株苗从基部切下,保证切口平整,避免撕裂茎秆,若基部 从继代培养苗中,挑选健壮、无畸形、高度2.5cm~3cm、带2片~3片展叶的单株苗,避免选用弱带有愈伤组织,需切除多余愈伤.

7.3接种后管理

接种后将组培苗置于光照强度3000lx、日均光照时长14h、温度24℃~26℃、湿度60%~70%的组培室中培养.从接种日起算,当生根至第35d~45d时,根系健壮、有分支,根数3条以上时,苗高2.5cm~ 3cm、带2片~3片展叶时可进行驯化,别化前需提前5d~7d开盖炼苗,逐步降低湿度,提高移裁成活率.

8病毒检测

8.1检测方法

转录一聚合酶链式反应)检测. 在组培苗生根培养化前进行病毒检测,每批次组培苗随机抽取5%~10%的样本,采用RT-PCR(逆

8.2检测步骤

8.2.1RNA提取

在超净工作台上切取五叶草莓组培苗叶片0.1g~0.2g,放入无菌无酶的2ml离心管,并放入1个钢珠做好相应标记,迅速置于液氮中备用.将样品放入组织研磨机中,研磨频率70Hz,研磨时间90s.按照试剂盒步骤(山东思科捷生物技术有限公司,新型植物RNA快速提取试剂盒,货号:AC0305),提取总RNA.

8.2.2反转录

按照试剂盒步骤(山东思科捷生物技术有限公司,SPARKscriptIIRTPlusKit,货号:AC0304),得到cDNA模板,置于-20C暂存备用.

8.2.3PCR检测

用primer5.0软件设计引物序列(参见附录A),在PCR管中依次加入3μLddHzO、0.5μLPrimerF、0.5μLPrimerR、3μL2XMix、1μLcDNA并离心混匀,放入PCR仪中,扩增条件设置为94C预变性3min:94℃变性30s,52C退火30 s,72℃延伸1min,共30个循环:72℃延伸10min,置于4C冰箱保存备用.

8.2.4琼脂糖凝胶电泳

吸取5uLPCR产物及Marker点入琼脂糖胶孔中,120V恒压条件下电泳20min.电泳完成后,通过凝胶成像系统观察目的片段,确认为无病毒,可进行驯化.

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