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GB/T 33119-2016 葡萄藤猝倒病菌检疫鉴定方法.pdf

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中华人民共和国国家标准

GB/T33119-2016

葡萄藤猝倒病菌检疫鉴定方法

Detection and identification of Eutypa lata (Pers.)Tul.et C.Tul

中国国家标准化管理委员会 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局 发布

前言

本标准按照GB/T1.1一2009给出的规则起草.

本标准由全国植物检疫标准化技术委员会(SAC/TC271)提出并归口,

本标准起草单位:中华人民共和国山东出人境检验检疫局、青岛检验检疫技术发展中心、中华人民共和国宁波出入境检验检疫局、中华人民共和国安徽出人境检验检疫局、中华人民共和国湖北出人境检验检疫局、中国科学院微生物研究所.

王振华、郭立新、蔡磊. 本标准主要起草人:王英超、段维军、厉艳、吴兴海、封立平、魏晓棠、甘琴华、纪瑛、邵秀玲、姚剑、

葡萄藤猝倒病菌检疫鉴定方法

1范围

本标准规定了葡萄藤猝倒病菌的检疫鉴定方法. 本标准适用于葡萄等寄主植物中葡萄藤猝倒病菌的检疫和鉴定.

2规范性引用文件

件.凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括的修改单)适用于本文件. 下列文件对于本文件的应用是必不可少的.凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文

GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法SN/T2122进出境植物及植物产品检疫抽样SN/T2589植物病原真菌检测规范

3葡萄藤猝倒病菌基本信息

学名 :Eatypa latα (Pers.) Tul.et C.Tul.

异名 :Eatypa armeniacae Hansf. &. M. V Carter:Eutypa fraxini ( Nitschke) Sacc Eutypa mil-liaria (Fr.) Sace ; Eatypa lata var.aceris Rappaz Mycol. Helv: Cytosporina lata Hohn: Libertella ble pharis A.L.Sm.

分类地位:采用(真菌词典)第10版分类系统,葡萄藤猝倒病菌(Eutypalata)属真菌界(Fungi),子囊菌门(Asycota),盘菌亚门(Pezizomycotina),粪壳菌網(Sordariomycetes),炭角菌目(Xylariales),蕉孢壳科(Diatrypaceae),弯孢壳属(Eatypa Tul&.C.Tul.1863).

茎、嫩枝、主干、枝条(菌丝),本材(孢子和菌丝)等. 传播途径:植物体在贸易和运输中能够传播该病害.植物体主要指树皮(孢子和菌丝),地上部分的

葡萄滕猝倒病菌的其他信息参见附录A.

4方法原理

葡萄滕猝倒病菌的为害症状、分离培养性状、形态特征和特异性PCR检测结果等是该检疫鉴定方法的主要依据.

5仪器设备和主要试剂

5.1仪器设备

生物显微镜、电子天平(感量0.001g)、离心机(12000g)、普通冰箱、超低温冰箱(一80℃)、涡旋振荡器、恒温光照培养箱、高压灭菌器、生物安全柜、PCR仪、电泳仪、凝胶分析成像系统、可调微量加样器、全自动DNA提取仪.

5.2主要试剂

0.5%次氯酸钠(NaCIO)、葡萄糖、琼脂、硫酸链霉素、盐酸金霉素、氯硝胺. 除另有规定外,试剂均为分析纯,实验用水应符合GB/T6682中相关规定.

6现场检疫

部主要看有无溃疡症状:枝条是否长势短小,发育受阻,着生的叶子是否萎黄,卷缩变形或破碎;顶部是 按照SN/T2589,仔细检查寄主植物的茎、枝条、叶片等部位是否出现疑似症状(参见附录A),茎否出现枯萎症状.对可疑植物、繁殖材料应取样送实验室做进一步检验,取样方法和步骤参照SN/T 2122.

7实验室检疫

7.1PCR凝胶电泳初筛检测

将第6章中的可疑植物、繁殖材料等样品进行PCR初筛检测,PCR凝胶电泳检测见附录B.对于阳性结果进行下一步检测.

7.2病原菌的分离和培养

7.2.1马铃薯葡萄糖琼脂培养基和选择性培养基的制备

马铃薯(去皮)200g;葡萄糖20g;琼脂15g;蒸馏水补至1000mL,121C湿热灭菌20min备用.分离培养时加硫酸链霉素(100μg/mL)、盐酸金霉素(50μg/mL)、氯硝胺(5μg/mL)作为选择性培养基.

7.2.2病原菌检查

检查寄主的树皮、枝条等组织有无子座、子囊壳,在显微镜下观察病菌的子囊壳,记录其形态特征,测量子囊和子囊孢子的大小.所获得分离物在马铃薯葡萄糖琼脂培养基进行单孢分离纯化.

7.2.3组织中病原菌的分离和培养

如果发现可疑症状,但不能按7.2.2进行有性型形态检查,应采取下列分离培养的方法做进一步的鉴定.剥去树皮,纵向劈开树干露出内部遗疡的边缘.在无菌条件下,从溃疡部分的外部边缘切取1cm²的薄木片,放在0.5%次氯酸钠溶液中浸泡2min~5min.用无菌水重复洗3次,然后用无菌滤纸吸干,放在选择性培养基上进行培养.24C培养4d~7d后,将疑似菌落转到马铃薯葡萄糖琼脂培养基上进行分离纯化.

8签定特征

8.1PCR凝胶电泳初筛检测

判定结果见附录B.

8.2培养性状

葡萄藤猝倒病菌在PDA培养基首先形成白色棉絮状菌丝,培养基背面奶油色.2周后,培养基上

出现灰色色素,培养基背面变成黑色.3周~4周后,在连续的光照培养下,形成小的黑色的分生孢子器.分生孢子丝状,直或弯曲数量多,大小(20pm~45μm)×(0.8μm~1.5μm).见附录C.

8.3子囊壳的特征

子囊壳直径大约0.5mm,在枝干或茎上不规则分布.子囊壳的孔口裂出,具有不明显的沟槽,子囊从子囊壳顶点释放,子囊顶尖内陷,子囊大小(30μm~60gm)×(5pm~7.5μm),子囊柄长60gm~130μm,数量很多,纺锤状,内含有8个子囊孢子.子囊孢子香肠状,金棕色,亚透明,(6.5μm~11μm)×(1.8μm~2m).在培养基上不能生成子囊壳(见附录C).

9结果判定

以PCR初筛结果、分离物的培养性状、子囊壳的特征等作为鉴定依据,进行综合判定.若PCR初筛结果为阳性,并发现子囊壳,且与8.3鉴定特征吻合,鉴定为葡萄藤猝倒病菌:若PCR初筛结果为阳 性,未发现子囊壳,但与8.2鉴定特征吻合,鉴定为葡萄藤猝倒病菌.

10样品保存

10.1样品保存与处理

复核.该类样品保存期满后应经高压灭菌后方可处理. 样品经登记和经手人签字后妥善保存.对检出葡萄藤猝倒病菌的样品应保存于4C冰箱中,以备

10.2菌株保存与处理

脂培养基斜面上,24C培养72h,然后4C冰箱保存.对不需要长期保存的菌株应及时高压灭菌处理. 从检测样品中分离并鉴定为葡萄藤猝倒病菌的菌株,应妥善保存.将菌株接种于马铃薯葡萄糖琼

10.3结果记录与资料保存

完整的实验记录包括:样品的来源、种类、时间,实验的时间、地点、方法和结果等,并要有实验人员和审核人员签字,PCR凝胶电泳检测需有电泳结果照片.

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