GB 23200.23-2016 食品中地乐酚残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法.pdf

残留量,规范,质谱法,强制性国家标准
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中华人民共和国国家标准

GB 23200.23-2016

食品安全国家标准 食品中地乐酚残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法

National food safety standards

Determination of dinosebresidue in foods

Liquid chromatography - mass spectrometry

中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会 中华人民共和国农业部 国家食品药品监督管理总局

发布

前言

本标准与SN/T2457-2010相比,主要变化如下: 本标准代替SN/T2457-2010《进出口食品中地乐酚残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法》.一标准文本格式修改为食品安全国家标准文本格式:一标准名称中“进出口食品”改为“食品”.一标准范围中增加“其它食品可参照执行”. 本标准所代替标准的历次版本发布情况为:-SN/T .

食品安全国家标准

食品中地乐酚残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法

1范围

本标准规定了食品中地乐酚残留量检验的液相色谱-质谱/质谱检测方法. 本标准适用于苹果、板栗、甘蓝、牛肉、蜂蜜、小麦、鸡肉、姜、茶叶、大豆和牛奶中地乐酚残留量的检测和确证,其它食品可参照执行.

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的.凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件.凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括的修改单)适用于本文件. GB2763食品安全国家标准食品中农药最大残留限量GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法

3原理

用乙晴提取试样中残留的地乐酚,经凝胶渗透色谱净化,用液相色谱-质谱/质谱仪检测,外标法定量.

4试剂和材料

除另有规定外,试剂均为分析纯,水为符合GB/T6682中规定的一级水.

4.1试剂

4.1.1乙睛(CHCN),高效液相色谱级.4.1.3环已烷(CH2). 4.1.2甲醇(CHOH),高效液相色谱级.4.1.4乙酸乙酯(CHO).4.1.5氯化钠(NaCI).

4.2溶液配制

4.2.1乙酸乙酯-环已烷(11,体积比):等体积的乙酸乙酯和环己烷互溶.

4.3标准品

4.3.1地乐酚标准品:分子式,CoHNOs:CAS88-85-7:纯度≥99%.

4.4标准溶液配制

4.4.1地乐酚标准储备溶液:准确称取适量的地乐酚标准品,用甲醇配制成100μg/mL标准储备液,-18℃以下储存.. 4.4.2地乐酚标准工作溶液:准确吸取适量的地乐酚标准储备溶液,用甲醇稀释至所需浓度,-18C

以下贮存.

4.5材料

4.5.10.22μm有机滤膜.

5仪器和设备

5.1液相色谱-质谱/质谱仪:配有电喷雾离子源.5.2分析天平:感量0.01g和0.0001g.5.3离心管:玻璃,50ml. 5.4凝胶渗透色谱仪.5.5涡旋混合器.5.6均质器. 5.7离心机.5.8旋转蒸发器.5.9氮气吹干仪.

6试样制备与保存

6.1试样制备

6.1.1水果、蔬菜、坚果

水果、坚果:取样品约500g,用粉碎机粉碎,装入洁净容器作为试样,密封并做好标识.

6.1.2粮谷、茶叶

温保存. 取样品约500g,用粉碎机粉碎至全部通过20目筛,装入洁净容器作为试样,密封并做好标识,室

6.1.3肉类产品

取有代表性样品约500g,用粉碎机粉碎,装入洁净容器作为试样,密封并做好标识.

6.1.4蜂蜜

取有代表性样品约500g,未结晶样品将其用力搅拌均匀,有结晶析出样品可将样品瓶盖塞紧后,置于不超过60C的水浴中,待样品全部溶化后搅匀,迅速冷却至室温.制备好的样品装入洁净容器内 密封并做好标识.

6.1.5牛奶

取有代表性的牛奶或奶粉样品,充分混匀,并作上标记. 注:以上样品取样部位按GB2763附录A执行.

6.2保存

温避光保存. 水果、蔬菜、坚果、肉类产品、牛奶等试样于-18C以下冷冻保存:粮谷、茶叶、蜂蜜等试样于室

制样操作过程中必须防止样品受到污染或发生残留物含量的变化.

7测定步骤

7.1提取

水,使样品充分润湿),加入25mlL乙和5g氯化钠,以10000r/min均质2min,以4000r/min离心10min, 称取茶叶样品约2.5g,其他基质样品约5g(精确到0.01g)于50mL离心管中(大豆样品加3ml上清液移入25mL比色管中,用乙晴定容至25ml.

7.2净化

7.2.1凝胶渗透色谱条件

a)净化柱S-X3Bio-Beads填料,粒径38μm-75μm,200mm×22mm(内径),或相当者:b)流动相:乙酸乙酯-环已烷,流速:5mL/min:d)净化程序:0min-10.5min弃去洗脱液,10.5min-15min收集洗脱液. c)进样量:5ml:

7.2.2净化过程

烷溶解液,按6.2.1的条件用凝胶渗透色谱仪净化.将收集的洗脱液于45C水浴上浓缩至干,准确加 准确移取5ml上述定容液,水浴45C下氮气流吹至近干,定容至10ml,取5ml乙酸乙酯-环己入1mlL甲醇溶解残渣,溶解液过0.22um有机滤膜,供液相色谱-质谱/质谱测定.

7.3测定

7.3.1液相色谱参考条件

a)色谱柱:C150mm×2.1mm(内径),粒径5μm,或相当者:b)柱温:30℃: c)进样量:5uLd)流动相梯度及流速见表1.

表1液相色谱梯度洗脱条件

0.1%的乙酸水溶时间(min) 液(%) 乙睛 (%) 流速(μL/min)0.0 30 70 2004. 0 30 70 2005. 0 10 06 2006.0 10 90 200

GB 23200.242016

6.1 30 70 2008.0 0 70 200

7.3.2质谱参考条件

a)离子源:电喷雾离子源(ESI):c)其他参考质谱条件见附录A. b)扫描方式:负离子扫描模式:

7.3.3定量测定

根据样液中被测物的含量情况,选定响应值相近的标准工作液.标准工作溶液和样液中分析物的响应值均应在仪器的检测线性范围内.对标准工作溶液和样液等体积参差进样测定.在上述色谱条件下地 乐酚的参考保留时间约为4.55min,地乐酚的标准多反应监测色谱图见附录B.

7.3.4定性测定

中,各定性离子的相对丰度与浓度接近的同样条件下得到的基质标准溶液谱图相比,误差不超过表2规 进行样品测定时,如果检出的质量色谱峰保留时间与标准样品一致,并且在扣除背景后的样品谱图定的范围,则可判断样品中存在对应的被测物.

表2定性确证时相对离子丰度的最大允许误差

相对丰度(基峰) >50 % >20 %至 50 % >10%至20% ≤10 %允许的相对偏差 ±20 % ±25 % ±30 % ±50 %

7.4空白实验

除不加试样外,均按上述测定步骤进行.

8结果计算和表述

用色谱数据处理机或按下式(1)计算试样中地乐酚农药的含量:

式中:

X一试样中地乐酚含量,单位为微克每干克,μg/kg:A一样液中地乐酚的峰面积:c一标准溶液中地乐酚的浓度,单位为纳克每毫升,ng/ml: V一样液最终定容体积,单位为毫升,mL:A.一标准溶液中地乐酚的峰面积:m一最终样液所代表的试样量,单位为克,g. 注:计算结果须扣除空白值,测定结果用平行测定的算术平均值表示,保留两位有效数字.

9精密度

9.1在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值(百分率),应符合附录D的要求.

9.2在再现性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值(百分率),应符合附录E的要求.

10定量限和回收率

10.1定量限

茶叶中地乐酚的定量限为10pg/kg,其他基质均为5μg/kg.

10.2回收率

在不同基质,三个不同添加水平的回收率范围见附录C.

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