中华人民共和国国家标准
GB 23200.38-2016
代替SN/T3035-2011
食品安全国家标准 植物源性食品中环己烯酮类除草剂残留量 的测定 液相色谱一质谱/质谱法
National food safety standards
Determination of cyclohexanedione herbicides residue in plant-derived foods
Liquid chromatography -mass spectrometry
中华人民共和国农业部 中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会 国家食品药品监督管理总局
发布
前言
/串联质谱法》 本标准代替SN/T3035-2011《出口植物源食品中环已烯酮类除草剂残留量的测定液相色谱-质谱
本标准与SN/T3035-2011相比，主要变化如下：一标准文本格式修改为食品安全国家标准文本格式：一标准范围中增加“其它食品可参照执行”.本标准所代替标准的历次版本发布情况为：SN/T 3035-2011.
食品安全国家标准
植物源性食品中环已烯酮类除草剂残留量的测定
液相色谱一质谱/质谱法
1范围
本标准规定了大米、大豆、玉米、小白菜、马铃薯、大蒜、葡萄和橙子中吡哺草酮（teproloxydim）、禾草灭（alloxydim）、噻草酮（cycloxydim）、苯草酮（methoxyphenone）、烯禾啶（sethoxydim）和烯
本标准适用于适用于大米、大豆、玉米、小白菜、马铃薯、大蒜、葡萄和橙子中吡哺草酮、禾草灭、噻草酮、苯草酮、烯禾啶和烯草酮6种环已烯酮类除草剂残留量的检测与确证，其它食品可参照执行.
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的.凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件.凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括的修改单）适用于本文件.
GB2763食品安全国家标准食品中农药最大残留限量
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法
3原理
采用乙提取试样中残留的环已烯酮类除草剂，提取液经C和Envi-Carb固相萃取柱净化，液相色谱-质谱/质谱检测和确证，外标法定量.
4试剂和材料
除另有规定外，试剂均为分析纯，水为符合GB/T6682中规定的一级水.
4.1试剂
4.1.1乙晴（CHCN）：色谱纯.4.1.2正已烷（CgH）：色谱纯. 4.1.3乙酸（CHCOOH）：色谱纯.4.1.4丙酮（CHO）：优级纯.4.1.5氯化钠（NaCI）.
4.2溶液配制
4.2.1正已烷-丙酮（64）：量取60mL正已烷，加入40mL丙酮，混匀.4.2.2乙晴-水溶液（11）：量取500mL乙晴，用水定容至1L，混匀.4.2.30.1%乙酸水溶液：取1.0mL乙酸，用水稀释并定容至1000mL.
4.3标准品
4.3.1标准物质：吡哺草酮（CASNo.79-41-9）、禾草灭（CAS No.55635-13-7）、噻草酮（CASNo.101205-02-1）、苯草酮（CAS No.87820-88-0）、烯禾啶（CASNo.74051-80-2）和烯草酮（CAS No. 99129-21-2），纯度≥99%（相关化学信息见附录A中表A.1）.
4.4标准溶液配制
4.4.1环已烯酮类农药标准储备溶液：分别准确称取适量的环已烯酮类农药标准物质，用乙晴配制成 浓度为1000mg/L的标准储备溶液，标准溶液避光于-18℃C保存，保存期为12个月.
4.4.2环已烯酮类农药混合中间标准溶液：吸取适量的各标准储备溶液，用乙晴稀释成浓度为1.0mg/L的混合中间标准溶液，0℃~4C避光保存，保存期为3个月.
4.4.3基质混合标准工作溶液：吸取适量的混合中间标准溶液，用空白样品提取液配成浓度为0ug/L、10.0μg/L、20.0μg/L、50.0μg/L、100 μg/L和200μg/L的基质混合标准工作溶液.当天配制.
4.5材料
GB 23200.382016
4.5.1石墨化碳黑固相萃取柱：3mL250mg，或相当者.使用前用3mL正已烷-丙酮溶液活化，保持柱体湿润. 4.5.2Cu固相萃取柱.使用前用5mL乙晴活化，保持柱体湿润.
4.5.3微孔滤膜：0.22μm，有机相型.
5仪器和设备
5.1液相色谱-质谱/质谱仪：配有电喷雾离子源（ESI）.5.2分析天平：感量0.01g和0.0001g. 5.3组织捣碎机.5.5涡旋混匀器. 5.6固相萃取装置，带真空泵.5.7氮吹浓缩仪.5.8离心机：转速不低于5000r/min.5.9离心管：50ml. 5.10刻度试管：15mL.
5.4粉碎机.
6试样制备与保存
6.1试样制备
6.1.1玉米、大豆和大米
取样品约500g，用粉碎机充分粉碎，混匀.试样均分为二份，装入洁净容器，密封，并标明标记
6.1.2小白菜、马铃薯、大蒜、葡萄和橙子
份，装入洁净容器，密封，并标明标记.于-18°C以下冷冻存放. 取样品约500g，将其（不可用水洗）切碎后，用捣碎机将样品加工成浆状，混匀.试样均分为二
注：以上样品取样部位按GB2763附录A执行.
6.2试样保存
在制样的操作过程中，应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化.玉米、大豆和大米试样于常温下保存.小白菜、马铃薯、大蒜、葡萄和橙子试样于-18°C以下冷冻存放.
7分析步骤
7.1提取
7.1.1玉米、大豆和大米
称取5g（精确至0.01g）试样于50mL具塞离心管中，加入10mL水，激涡混匀后放置1h.然后加入4.0g氯化钠，再加入15mL乙晴高速均质提取3min，振荡提取15min，于5000r/min离心5min，将乙层转移至25mL容量瓶中.残渣再用10mL乙重复提取一次，合并提取液，并用乙晴定容至25mL.
7.1.2小白菜、马铃薯、大蒜、葡萄和橙子
称取5g（精确至0.01g）试样于50mL具塞离心管中，然后加入2.0g氯化钠，再加入15mL乙晴高速均质提取3min，振荡提取15min，于5000r/min离心5min，将乙晴层转移至25mL容量瓶中.残渣再 用10mL乙重复提取一次，合并提取液，并用乙晴定容至25mL.
7.2净化
7.2.1大豆和玉米
吸取5.0mL提取液于C18固相萃取柱中，以约1.5mL/min的流速使样液全部通过固相萃取柱，再用3mL乙淋洗并抽干固相萃取柱，收集全部流出液于15mL离心管中，40C下用氮气吹至近干.残渣用3.0mL正已烷-丙酮溶解，将溶解液加入处理过的Envi-Carb固相萃取柱中，以约1.5mL/min的 流速使样液全部通过固相萃取柱，再用5mL正己烷-丙酮润洗样品管，并将润洗液一并加入Envi-Cab固相萃取柱，收集全部流出液于15mL离心管中，于40C水浴中氮吹至近干，残余物用1.0mL乙晴-水溶解，旋涡混匀后，过微孔滤膜，供液相色谱一质谱/质谱仪测定.
7.2.2大米、小白菜、马铃薯、大蒜、葡萄和橙子
取5.0mL提取液于15mL离心管中，40C下用N2吹至近干.残渣用2.0mL正已烷-丙酮溶解，将溶解液加入处理过的Envi-Carb固相萃取柱中，以约1.5mL/min的流速使样液全部通过固相萃取柱，再 用5mL正已烷-丙酮润洗样品管，并将润洗液一并加入Envi-Carb固相萃取柱，收集全部流出液于15mL离心管中，于40C水浴中氮吹至近干，残余物用1.0mL乙晴-水溶解，旋涡混匀后，过微孔滤膜，供液相色谱一质谱/质谱仪测定.
7.3测定
7.3.1液相色谱参考条件
a）色谱柱：Waters Acquity BEHCn色谱柱，50mm×2.1 mm(i.d.），1.7 μm，或相当者： b）柱温：40C：c）进样量：10uL：d）流动相、流速及梯度洗脱条件见表1.
表1流动相、流速及梯度洗脱条件
时间 流速 0.1%乙酸水溶液 乙睛min mL/min % %5.0 0 0.30 0.30 50 506.0 0.30 01 01 90 907.5 0.30 50 50
7.3.2质谱参考条件
a)离子化模式：电喷雾离子源：b)扫描方式：正离子扫描：c）检测方式：多反应监测（MRM）：d分辨率：单位分辨率： 其它参考质谱条件见附录B.
7.3.3色谱测定与确证
7.3.3.1定性测定
每种被测组分选择1个母离子，2个以上子离子，在相同实验条件下，样品中待测物质的保留时间，与基质标准溶液的保留时间偏差在土2.5%之内：且样品中各组分定性离子的相对丰度与浓度接近的基质混合标准工作溶液中对应的定性离子的相对丰度进行比较，偏差不超过表2规定的范围，则可判 定为样品中存在对应的待测物.
表2使用液相色谱-串联质谱法定性时相对离子丰度最大容许误差
相对丰度（基峰） >50 % >20 %至 50 % >10 %至 20 % ≤10 %允许的相对偏差 ±20 % ±25 % ±30 % ±50 %
7.3.3.2定量测定
溶液浓度为横坐标绘制标准工作曲线，用标准工作曲线计算进样溶液中被测组分溶液浓度（C），样品 在仪器最佳工作条件下，对基质混合标准工作溶液进样，以峰面积为纵坐标，基质混合标准工作溶液中待测物的响应值均应在仪器测定的线性范围内，如果超出线性响应范围，应用空白基质溶液进行适当稀释.6种环已烯酮标准物质的多反应监测（MRM）色谱图参见附录C中的图C.1.
7.4空白实验
除不加试样外，均按上述测定步骤进行.
8结果计算和表述
用色谱数据处理机或按下式（1）计算试样中各环已烯酮类农药的含量：
