GB 5009.222-2026 食品安全国家标准 食品中桔青霉素的测定.pdf

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中华人民共和国国家标准

GB 5009.222-2026

食品安全国家标准 食品中桔青霉素的测定

中华人民共和国国家卫生健康委员会 国家市场监督管理总局 发布

前言

本标准代替GB5009.222-2016(食品安全国家标准食品中枯青霉素的测定》.本标准与GB5009.222-2016相比,主要变化如下:一将原标准第一法免疫亲和柱净化-高效液相色谱法和第二法C固相萃取小柱净化-高效液相 修改了标准的适用范围:色谱法合并为第一法液相色谱法;一增加了液相色谱-质谐/质谱法为第二法.

食品安全国家标准

食品中桔青霉素的测定

1范围

本标准规定了食品中桔青霉素的测定方法.第一法液相色谱法和第二法液相色谱-质谱/质谱法适用于食品中枯青霉素的测定.

第一法液相色谱法

2原理

试样经甲醇-水提取,免疫亲和柱或C固相萃取柱净化,液相色谱-荧光检测器检测,外标法定量.

3试剂和材料

除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水.

3.1试剂

3.1.1乙晴(CHCN):色谱纯.3.1.2乙晴(CHCN).3.1.3磷酸(HPO4):色谱纯.3.1.4丙三醇(CH,O).3.1.5甲醇(CHOH) 3.1.6盐酸(HCI).3.1.7氢氧化钠(NaOH).3.1.8氯化钠(NaCl).3.1.9磷酸氢二钠(NaHPO).3.1.10磷酸二氢钾(KHPO).3.1.12吐温-20(CHO) 3.1.11氯化钾(KCI).

3.2试剂配制

3.2.10.1%磷酸溶液:吸取1.0mL磷酸,加水稀释至1000mL,混匀.3.2.2乙晴-水(2080):量取20ml乙晴和80mL水,混匀.3.2.410%丙三醇甲醇溶液:称取1.0g丙三醇,用甲醇稀释至10mL,混匀. 3.2.3甲醇-水(7030):量取700mL甲醇和300mL水,混匀.

GB 5009.222-2026

3.2.5磷酸盐缓冲液(PBS):称取8.0g氯化钠、1.2g磷酸氢二钠、0.2g磷酸二氢钾、0.2g氯化钾,用980mL水溶解后,盐酸调pH值至7.2~7.6.再加水至1000mL,混匀.3.2.6含0.5%吐温-20的磷酸盐缓冲液(PBS-T):称取5g吐温-20,加人PBS稀释至1000mL 混匀.

3.3标准品

3.3.1桔青霉素(C,H,O;,CAS号:518-75-2):纯度≥99%的标准品或其溶液.

3.4标准溶波配制

3.4.1标准储备溶液(100mg/L):称取桔青霉素10.0mg(精确至0.1mg)至小烧杯中,加乙晴溶解,转移至100mL容量瓶中,以乙晴定容至刻度,混匀,得到质量浓度为100mg/L的标准储备溶液.将溶液转移至棕色试剂瓶中,于一18℃及以下温度避光保存,有效期12个月.3.4.2标准中间溶液(10.0mg/L):准确吸取1.00mL.标准储备溶液至10.0mL容量瓶中,加乙晴稀 释,定容至刻度,混匀,得到质量浓度为10.0mg/1的标准中间溶液.将溶液转移至棕色试剂瓶中,于一18℃及以下温度避光保存,有效期12个月.3.4.3标准工作溶液(1.00mg/L):准确吸取1.00mL标准中间溶液至10.0mL容量瓶中,加乙睛稀释,定容至刻度,混匀,得到质量浓度为1.00mg/L的标准工作溶液.将溶液转移至棕色试剂瓶中,在2C~6℃下避光保存,有效期3个月,3.4.4标准系列工作溶液:准确移取标准工作溶液适量,用乙晴-水(2080)配制成质量浓度分别为 1.00μg/L、2.00μg/L、5.00μg/L、20.0μg/L、100μg/L的标准系列工作溶液.临用现配.

3.5材料

3.5.1免疫亲和柱:柱容量≥150ng,柱回收率≥85%.3.5.2C固相萃取柱(1g/6mL),或相当者.3.5.4微孔滤膜:0.45μm,有机系. 3.5.3玻璃纤维滤纸.

4仪器和设备

4.2电子天平:感量分别为0.01g、0.001g和0.1mg. 4.1液相色谱仪:配有荧光检测器.4.3离心机:转速≥6000r/min4.4振荡器:转速≥1000r/min4.5涡旋混合器.4.6高速粉碎机.4.7组织接碎机. 4.8固相萃取装置.4.9高速匀浆机.4.10超声波清洗器:功率不小于250W

5分析步骤

5.1试样制备与保存

5.1.1试样制备

检测用的样品量应大于1kg;当样品量不足1kg时,至少取同一批次的3个包装;缩分后取不低于0.5kg.其中,固体样品用高速粉碎机粉碎,半固体样品用组织搞碎机捣碎,液体样品用匀浆机匀浆.

注1:对于高油脂含量额粒样品、柔韧性样品、高黏度样品、高糖样品等特殊样品可采取冷冻等措施进行制样.注2:对于碳酸饮料或酒类等:可采取超声、搅拌或抽真空等措施脱气后混匀. 注3:根据检验目的可按实际情况取样钢备.

5.1.2试样保存

制备后混合均匀的样品均分至约100g的多个包装,储存于活净的容器内,密封后根据样品性质置于2℃~6℃或一18℃及以下避光保存.

5.2试样提取

5.2.1固体、半固体试样(红曲类除外)

称取试样5g(精确至0.01g)于50mL离心管中,加人25mL甲醇-水(7030),振荡(或超声)提取30min,于6000r/min或更高转速下离心5min,上清液待净化,

5.2.2固体、半固体红曲类试样

取30min,于6000r/min或更高转速下离心5min,上清液待净化.

5.2.3液体试样

称取试样5g(精确至0.01g)于25mL容量瓶中,加水定容至刻度,再转移到50mL离心管中,振荡提取30min,于6000r/min或更高转速下离心5min,上清液待净化.

5.3试样净化

5.3.1免疫亲和柱净化

吸取1.00mL提取液,加PBS-T稀释至20mL,混匀(如有浑浊,用玻璃纤维滤纸过滤或高速离心后再上柱),待免疫亲和柱恢复至室温后,将样品稀释液过免疫亲和柱,流速控制在1mL/min~3mL/min,待上样完毕,依次用10mLPBS-T、10mLPBS溶液淋洗免疫亲和柱,抽干,2mL甲醇洗脱(控制流速约为1mL/min),抽干,收集洗脱液,加人50μL10%丙三醇甲醇溶液,40℃下氮气吹干,加入1.00mL乙晴-水(2080)复溶,涡旋振荡30s,过微孔滤膜于进样瓶中,待测.

注:由于不同厂商提供的免疫亲和柱操作程序可能不同,实际操作时,请参照厂商提供的操作说明和程序使用.

5.3.2C固相萃取柱净化(仅适用于谷物及其制品试样)

C固相萃取柱在使用前依次用6mL甲醇、6mL水活化.

吸取1.00mL提取液,用水稀释至20mL,混匀(如有浑浊,用玻聘纤维滤纸过滤或高速离心后再上

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