GB 5009.83-2016 食品安全国家标准 食品中胡萝卜素的测定 含2025年第1号修改单.pdf

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中华人民共和国国家标准

GB5009.83-2016

食品安全国家标准 食品中胡萝卜素的测定

中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会 国家食品药品监督管理总局 发布

前言

GB/T5009.83-2003《食品中胡萝卜素的测定》和NY/T82.15-1988《果汁测定方法3-胡萝卜素的 本标准代替GB5413.35-2010《食品安全国家标准婴幼儿食品和乳品中3-胡萝卜素的测定》、测定》.

本标准与GB5413.35-2010相比,主要变化如下:

标准名称修改为“食品安全国家标准食品中胡萝卜素的测定”:增加了需要区分a-胡萝卜素、3-胡萝卜素的色谱条件; 增加了普通食品的前处理方法;修改了胡萝卜素的结果表达.

食品安全国家标准

食品中胡萝卜素的测定

1范围

本标准规定了食品中胡萝下素的测定方法.食品中3-胡萝卜素的测定. 本标准色谱条件一适用于食品中a-胡萝卜素、3-胡萝卜素及总胡萝卜素的测定,色谐条件二适用于

2原理

法定量. 试样经皂化使胡萝卜素释放为游离态,用石油醚萃取二氯甲烷定容后,采用反相色谱法分离,外标

3试剂和材料

除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水.

3.1试剂

3.1.1a-淀粉酶:酶活力≥1.5U/mg.3.1.2木瓜蛋白酶:酶活力≥5U/mg.3.1.4无水硫酸钠(NaSO ). 3.1.3氢氧化钾(KOH).3.1.5抗坏血酸(CHO).3.1.6石油醚:沸程30C~60℃.3.1.7甲醇(CHO):色谱纯.3.1.8乙睛(CHN):色谱纯. 3.1.9三氯甲烷(CHCI):色谱纯.3.1.10甲基叔丁基醚[CHOC(CH)]:色谱纯.3.1.11二氯甲烷(CHCL):色谐纯.3.1.12无水乙醇(CHO):优级纯.3.1.13正已烷(CH):色谱纯. 3.1.142,6-二叔丁基-4-甲基苯酚(CHO,BHT).

3.2试剂配制

氢氧化钾溶液:称固体氢氧化钾500g,加人500mL水溶解.临用前配制.

3.3标准品

3.3.1α-胡萝卜素(C.HCAS号:7488-99-5):纯度≥95%,或经国家认证并授予标准物质证书的标

准物质.3.3.2β-胡萝卜素(CH,CAS号:7235-40-7):纯度≥95%,或经国家认证并授予标准物质证书的标准物质.

3.4标准溶液配制

3.4.1α-胡萝卜素标准储备液(500μg/mL):准确称取a-胡萝卜素标准品50mg(精确到0.1mg).加人0.25gBHT,用二氯甲烷溶解,转移至100mL棕色容量瓶中定容至刻度.于一20C以下避光储存,使用期限不超过3个月,标准储备液用前需进行标定,具体操作见附录A.

3.4.2a-胡萝卜素标准中间液(100yg/mL):由e-胡萝卜素标准储备液中准确移取10.0mL溶液于50mL棕色容量瓶中,用二氯甲烷定容至刻度.

3.4.3p-胡萝卜素标准储备液(500μg/mL):准确称取3-胡萝卜素标准品50mg(精确到0.1mg).加人0.25gBHT,用二氯甲烷溶解,转移至100mL棕色容量瓶中定容至刻度.于一20C以下避光储存,使 用期限不超过3个月,标准储备液用前需进行标定,具体操作见附录A.

注:β-胡萝卜素标准品主要为全反式(all-E)3-胡萝卜素,在储存过程中受到温度、氧化等因素的影响,会出现部分全反式β-胡萝卜素异构化为顺式β-胡萝卜素的现象如9-顺式(9Z)-3-胡萝卜素、13-顺式(13.Z)-β-胡萝卜累、15-顺式(15Z)-3-胡萝卜累等.如果采用色谱条件一进行9-胡萝卜素的测定,应按照附录B确认p-胡萝卜索异 构体保留时间,并计算全反式p-胡萝卜素标准溶液色谱纯度.

3.4.4p-胡萝卜素标准中间液(100pg/mL):从3-胡萝卜素标准储备液中准确移取10.0mL溶液于50mL棕色容量瓶中,用二氯甲烷定容至刻度.

3.4.5a-胡萝下素、B-胡萝卜素混合标准工作液(色谱条件一用):准确移取a-胡萝下素标准中间液0.50mL、1.00mL、2.00mL、3.00mL、4.00mL、10.00mL溶液至6个100mL棕色容量瓶,分别加人 3.00mlg-胡萝下素中间液,用二氯甲烷定容至刻度,得到a-胡萝下素浓度分别为0.5yg/mL、1.0 μg/mL、2.0μg/mL、3.0μg/mL、4.0μg/mL、10 00μg/mL,β-胡萝卜素浓度均为 3.0 μg/mL 的系列混合标准工作液.

3.4.63-胡萝卜素标准工作液(色谱条件二用):从p-胡萝下素标准中间液中分别准确移取0.50mL、 1.00mL、2.00mL、3.00mL、4.00mL、10.00mL溶液至6个100mL棕色容量瓶.用二氯甲烷定容至/0工作液.

4仪器和设备

4.1匀浆机.4.2高速粉碎机.4.3恒温振荡水浴箱:控湿精度土1C.4.4旋转蒸发器. 4.5氮吹仪.4.6紫外-可见光分光光度计.4.7高效液相色谱仪(HPLC仪):带紫外检测器.

5分析步骤

注:整个实验操作过程应注意避光.

5.1试样制备

样用匀质器混匀;固体粉末状试样和液体试样用前振摇或搅排混匀.4C冰箱可保存1周. 谷物、豆类、坚果等试样需粉碎、研磨、过筛(筛板孔径0.3mm~0.5mm);蔬菜、水果、蛋、藻类等试

5.2试样处理

5.2.1普通食品试样

5.2.1.1预处理

蔬菜、水果、菌藻类、谷物、豆类、蛋类等普通食品试样准确称取混合均匀的试样1g~5g(精确至0.001g),油类准确称取0.2g~2g(精确至0.001g),转至250mL锥形瓶中,加入1g抗坏血酸、75mL无水乙醇于60℃±1C水浴振荡30min.

如果试样中蛋白质、淀粉含量较高(>10%),先加人1g抗坏血酸、15mL45℃~50C温水、0.5g木瓜蛋白酶和0.5gα-淀粉酶,盖上瓶塞混匀后,置55℃士1C恒温水浴箱内振荡或超声处理30min后,再加入75mL无水乙醇,于60C土1C水浴振荡30min.

5.2.1.2皂化

加人25mL氢氧化钾溶液,盖上瓶塞,置于已预热至53C士2C恒温振荡水溶箱中,皂化30min取出静置,冷却到室温.

5.2.2添加β-胡萝卜素的食品试样

5.2.2.1预处理

固体试样:准确称取1g~5g(精确至0.001g),置于250mL锥形瓶中,加人1g抗坏血酸,加50mL45℃~50C温水混匀.加人0.5g木瓜蛋白酶和0.5gα-淀粉酶(无淀粉试样可以不加α-淀粉 酶),盖上瓶塞,置55C士1C恒温水溶箱内振荡或超声处理30min.

液体试样:准确称取5g~10g(精确至0.001g),置于250mL锥形瓶中,加人1g抗坏血酸.

5.2.2.2皂化

取预处理后试样,加人75mL无水乙醇,摇匀,再加人25mL氢氧化钾溶液,盖上瓶塞.置于已预热至53C士2C恒温振荡水浴箱中,皂化30min.取出静置,冷却到室温.

注:如皂化不完全可适当延长皂化时间至1h.

5.3试样萃取

将皂化液转人500mL分液漏斗中,加人100mL石油醚,轻轻摇动,排气,盖好瓶塞,室温下振荡10min后静置分层,将水相转人另一分液漏斗中按上述方法进行第二次提取,合并有机相,用水洗至近中性.弃水相,有机相通过无水硫酸钠过滤脱水.滤液收人500mL蒸发瓶中,于旋转蒸发器上40C土2C减压浓缩,近干.用氮气吹干,用移液管准确加人5.0mL二氯甲烷,盖上瓶塞,充分溶解提 取物.经0.45μm膜过滤后,弃出初始约1mL滤液后收集至进样瓶中,备用.

注:必要时可根据待测样液中胡萝卜素含量水平进行浓缩或稀释,使待测样液中α-胡萝卜素和/或B-胡萝卜累浓度

在 0 5 μg/mL~10 μg/mL 范围内.

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