SN/T 4864-2017 转基因玉米检测 微流体芯片检测方法.pdf

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中华人民共和国出入境检验检疫行业标准

SN/T 4864-2017

转基因玉米检测 微流体芯片检测方法

Transgenic maize detection-Taqman array cardmethod

中华人民共和国 国家质量监督检验检疫总局 发布

前言

本标准按照GB/T1.1-2009给出的规则起草.

请注意本文件的某些内容可能涉及专利.本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任.

本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口.

ScientificCorp、中华人民共和国天津出人境检验检疫局. 本标准起草单位:中华人民共和国辽宁出人境检验检疫局、LifeTechnologiesBrand、Thermofisher

本标准主要起草人:徐君怡、曹际娟、YaleiWu、郑秋月、徐杨、那晗、JennyXiao、贺艳、王建新、黄志、陈大军.

转基因玉米检测微流体芯片检测方法

1范围

本标准规定了食品中转基因玉米TC1507、NK603、MON87640、MON863、MON810、MIR162、GA21、DAS40278、BT176、BT11、98140、59122、3272、MON89034、MIR604、MON88017、T25等17个品系的微流体芯片检测方法.

本标准适用于玉米及其加工产品中转基因玉米TC1507、NK603、MON87640MON863、MON810、MIR162.GA21、DAS40278BT176、BT11 98140、59122、3272 MON89034.MIR604、MON88017、T25等17个品系的定性筛查检测.

本方法的定性检测低限为1%(质量分数).

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的,凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件.凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括的修改单)适用于本文件.

GB/T6682分析实验室用水规格和试脸方法GB/T19495.2转基因产品检测实验室技术要求GB/T19495.3转基因产品检测 核酸提取纯化方法GB/T19495.7转基因产品检测 抽样和制样方法

3术语和定义

下列术语和定义适用于本文件

3.1

转基因transgene

将物种本身不具有的、来源于其他物种的功能DXA序列,通过各种导人手段,使其在该物种中进行表达,以便该物种获得新的品种特征.

3.2

内源基因endogenous gene

基因的定量分析. 在栽培的物种中拷员数恒定的、不显示等位基因变化的基因,该基因可用于对基因组中某一目的

3.3

外源基因exogenousgene

利用生物工程技术转人的其他生物基因,使该生物品种表现新的生物学性状.

4方法原理

TaqMan技术是一种应用于核酸实时PCR检测的专利技术.该技术使用根据靶标核酸设计合成的DNA单链,并在单链的两端分别联上荧光报告基团和荧光淬灭基团,此结构称为TaqMan探针.

在PCR扩增的过程中,TaqDNA聚合酶会切断特异性结合在靶标DNA链上的TaqMan探针,使得探针的荧光报告基团发出特定波长的荧光,实现DNA分子的扩增与反应体系发出的荧光增长具有高度的一致性同步,通过荧光检测仪器,即可在PCR扩增的过程中,实时地检测或者定量反应体系中的DNA分子数目.

TaqMan微流体芯片将TaqMan探针包埋于微流体芯片检测卡中,使用TaqMan技术进行检测.

5仪器设备和主要试剂

5.1仪器设备

高速冷冻离心机:水浴培养箱:天平:感量0.001g:TagMan微流体芯片兼容PCR仅(适用的机型包括7900fastHT、ViA7、QuantStudioQ7、QuantStudio12K):带有离心适配器的高速离心机:超净 工作台:制冰机:核酸蛋白分析仪:低温冰箱:纯水器或双蒸水器:旋满振荡器:微量进样器(0.5pL、2 μl.、100 μL).

5.2主要试剂

除另有规定外,试剂均为分析纯或生化试剂.

醇:70%乙醇:CTAB裂解液:3%CTAB(质量与体积的比值).1.4mol/LNaC1,0.2%(体积分数)硫基乙 实验用水:应符合GB/T6682中一级水的规格:TaqMan微流体芯片检测卡:氯仿:异戊醇:异丙醇.20 mmol/L EDTA 100 mmol/L Tris-HCI pH8.0; TE 级 液:10 mmol/L Tris-HCI pH 8.0;1 mmol/L EDTA pH8.0.

6检验方法

6.1防污染措施

TaqMan微流体芯片检测过程的防污染措施应符合GB/T19495.2的规定,

6.2抽样制样

按照GB/T19495.7的规定执行.

6.3核酸提取纯化

荡保温1h:2000r/min离心5min;取上清液,加等体积氯仿/异皮醇(体积比:24/1)混匀,静置5min, 称取1g粉样于10mL离心管中,加人5mLCTAB裂解液(含适量RNA酶),混匀,60C水溶振8000r/min离心5min:小心取离心上清液,再加等体积氯仿/异戊醇(体积比:24/1)混匀,静置5min,8000r/min离心5min;取离心上清液加0.65倍体积的异丙醇,混匀,12000r/min4C离心10min:弃上清液,加500μL70%冰乙醇洗涤一次,12000r/min4C离心5min;弃上清液,将沉淀晾干,加人50μLTE,溶解沉淀(4C过夜,或37C保温1h):此即为总DNA提取液,

也可用相应市售DNA提取试剂盒提取DNA,或按照GB/T19495.3执行.

6.4TaqMan微流体芯片检测方法

6.4.1阴性对照、阳性对照和空白对照的设置

检测过程中应按照GB/T19495.2中的规定设置对照.阴性目标DNA对照:不含外源目标核酸序列的DNA片段.

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品(或生物)中提取的DNA. 阳性目标DNA对照:参照DNA,或从可溯源的标准物质提取的DNA,或从含有已知序列阳性样

扩增试剂对照:该对照包括除了测试样品DNA模板以外的反应试剂,在TaqMan微流体芯片反应体系中用相同体积的水(不含核酸)取代模板DNA.

6.4.2TagMan微流体芯片反应体系

TagMan微流体芯片反应体系见表1,转基因玉米品系筛查检测所需的引物、探针信息见附录A.

表1TaqMan微流体芯片反应体系

试剂名称 pL/反痘2 × TaqMan Evironmental MasterMix 2.0 50DNA 模板(60 ng/μL~ 100 ng/μL) 5补水至 100注:表中DNA模板为原料的模板量,加工产品可视加工程度适当增加模板量:也可根据具体情况或不同的反应 总体积进行适当调整,

6.4.3TaqMan微流体芯片的工作流程

6.4.3.1上样

样孔即可,每张芯片,根据定制的格式不同,可以加人1个~8个样品的反应液. 将样品核酸和PCR预混液混合后,用移液器将100pL该溶液直接加人TaqMan微流体芯片的加

6.4.3.2离心进样

将TagMan微流体芯片效人专用的离心适配器中,在331g的吊桶式转头下离心两次,每次1min.通过此步骤,PCR反应液均匀地分配到384个PCR反应腔中.

6.4.3.3封口

TaqMan微流体芯片配备专用的封口器,可对进样后的芯片进行封闭处理:将芯片上各反应腔体的通路封闭,形成384个彼此独立的反应室.

束位置,随后将芯片取下,用剪刀将芯片突出的加样部分剪除即可完成对芯片的封口处理. 把待封口的芯片按照指定朝向放人封口器,手握封口器把手,平缓地把把手由起始位置推到封口结

6.4.3.4上机运行

TaqMan微流体芯片的运行需要配合兼容的PCR模块(Block)和热盖(HeatCover),适用的机型2min;95℃10min;95℃15s 60℃1min.40个循环. 为7900fastHT.ViiA7.QuantStudioQ7、QuantStudio12K.共4种.反应按照以下条件进行:50℃C

6.4.4结果分析

6.4.4.1基线的设置

TaqMan微流体芯片实时荧光PCR反应结束并分析结果后,应设置无效基线范围.无论采用任何荧光通道(FAM或VIC),基线范围选择在3个~15个循环,如果有强阳性样本,应根据实际情况调整

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